ORIGINAL_ARTICLE
اثر مقادیر و زمان مصرف انواع کمپوست¬های آلی بر تراکم و زیست توده علف¬های هرز
زیره سبز (Cuminum cyminum L.)
به منظور ارزیابی اثر مقادیر و زمان مصرف انواع کمپوستهای آلی بر جمعیت علفهای هرز و عملکرد زیره سبز (Cuminum cyminum L.) آزمایشی در سال زراعی 88-1387 در مزرعه تحقیقاتی دانشکده کشاورزی دانشگاه فردوسی مشهد انجام شد. سه نوع کمپوست آلی (مرغی، گاوی و بقایای بستر قارچ) در سه مقدار (صفر، 20 و 40 تن در هکتار) و سه زمان مصرف (همزمان با کاشت، یک ماه بعد و نیمه اسفند ماه) بصورت کرتهای دوبار خرد شده در قالب طرح بلوکهای کامل تصادفی با اختصاص نوع کمپوست، مقدار و زمان مصرف به ترتیب به کرتهای اصلی، فرعی و فرعی در چهار تکرار مورد ارزیابی قرار گرفت. بر اساس نتایج این آزمایش بیشترین تعداد گونه علفهای هرز موجود در زیره سبز، گونههای پهن برگ بوداند. علفهای هرز پاییزه شامل خاکشیر ایرانی و تلخ، گندمک، یولاف وحشی، شاهتره و درشتوک و علفهای هرز بهاره آن شامل سلمه، هفت بند، سیزاب و تاجریزی بودند. تراکم تمام گونههای علفهای هرز بجز گندمک و خاکشیر تلخ و نیز تراکم کل علفهای هرز بطور معنیدار تحت تأثیر مقدار مصرف کمپوست قرار گرفت. بیشترین تراکم کل علفهای هرز در تیمار مصرف کمپوست بستر قارچ و نیز مصرف در یک ماه بعد از کاشت مشاهده شد. اثر مقدار و زمان مصرف کمپوست بر زیست توده خشک علفهای هرز معنیدار بود، بطوریکه کمترین زیست توده علفهای هرز در شرایط مصرف کمپوست گاوی در نیمه اسفند ماه حاصل شد. با افزایش میزان مصرف کمپوست، زیست توده علفهای هرز افزایش یافت. بدین ترتیب، چنین به نظر میرسد که باتوجه به دسترسی آسان و مقرون به صرفه بودن کمپوست گاوی، مصرف این نوع کمپوست میتواند به کاهش تراکم علفهای هرز در مزرعه زیره سبز کمک نماید.
https://ijws.areeo.ac.ir/article_1096_667b0d5006da66b2f1ca699da68a03e2.pdf
2010-08-23
1
18
زیره سبز
کود دامی
کمپوست بستر قارچ
تکتم
کبودی
1
کارشناسی ارشد
AUTHOR
رضا
قربانی
ghorbani43@gmail.com
2
استاد دانشگاه
AUTHOR
مهدی
نصیری محلاتی
3
محقق
AUTHOR
علی اصغر
محمد آبادی
4
محقق
AUTHOR
سرور
خرمدل
5
محقق
AUTHOR
Ahmadian, A., Ghanbari, A. and Galavi, M. 2006. Effect of animal manure on quantitative and qualitative yield and chemical composition of essential oil in cumin (Cuminum cyminum). Iranian J. Field Crops Res. 2: 207-216. (In Persian with English Summary)
1
Azizi, M., Alimoradee, L. and Rashed Mohassel, M. H. 2006. Allelopathic effects of Bunium persicum and Cuminum cyminum essential oils on seed germination of some weeds species. Iranian J. Med. Aromatic Plants. 22:198-208. (In Persian with English Summary)
2
Blackshaw, R.E., Molnar, L.J. and Larney, F.J. 2005. Fertilizer, manure and compost effects on weed growth and competition with winter wheat in western Canada. Crop Prot. 24: 971–980.
3
Courtney, R.G., Jordan, S.N. and Harrington, T. 2009. Physico-chemical changes in bauxite residue following application of spent mushroom compost and gypsum. Land Degrad. Dev. 20: 572-581.
4
Delghandi, M.R. 2004. Weeds flora of cumin field. Papers Conclusion of First National Congress of Medicinal and Aromatic Plants. Shahrekord. (In Persian with English Summary)
5
DiTomoso, J.M. 1995. Approaches for improving crop competitiveness through the manipulation of fertilization strategies. Weed Sci. 43:491-497.
6
Duggan, J.T., Mccabe, J., Hennery, M.J. and Maher, M.J. 1998. Can spent mushroom www.ucd.ie/agri/html/homepage/research_96_98/ compost be used as a crop nutrient source.
7
Ghanbari, A., Ahmadian, A. and galavi1, M. 2005. The effect of irrigation times and animal manure on yield and yield components of cumin (Cuminum cyminum ). Iranian J. Field Crops Res. 2: 256-261. (In Persian with English Summary)
8
Ghorbani, R., Koochaki, A., Asadi, G.A. and Jahan, M. 2008. Effect of organic amendments and compost extracts on tomato production and storability in ecological production systems. Iranian J. Field Crops Res. 1: 110-115. (In Persian with English Summary)
9
Gora, D.R Meena, N.L. Shivran, D.L. and Shivran, D.R. 1996. Dry matter accumulation and nitrogen uptake in cumin (Cuminum cyminum L.) as affected by weed control and time application. Indian J. Agron. 41:666-667.
10
Husseini, A.A. Rashed Mohassel, M.H. Nassiri Mahallati, M. and Hajmohammadnia Ghalibaf, K. 2009. The influence of nitrogen and weed interference periods on corn (Zea mays L.) yield and yield components. Iranian J. Plant Protect. 23(1): 97-105. (In Persian with English Summary)
11
Iqbal, J. and Wright, D. 1997. Effects of nitrogen supply on competition between wheat and three annual weed species. Weed Res. 37:391-400.
12
Joshi, D., Hooda, K.S., Bhatt, J.C., Mina, B.L. and Gupta, H.S. 2009. Suppressive effects of composts on soil-borne and foliar diseases of French bean in the field in the western Indian Himalayas. Crop Prot. 28:608–615.
13
Kafi, M. and Rashed Mohassel, M.H. 2000. The effects of weeding times and weeds density on yield and yield components of cumin (Cuminum cyminum). J. Agr. Sci. Tech. 2:151-158. (In Persian with English Summary)
14
Kafi, M. and Rashed Mohassel, M.H., Koochaki, A. and Mollafilabi, A. 2002. Cumin (Cuminum cyminum) production and processing. mashhad publication. (In Persian with English Summary)
15
Mehriya, M.L., Yadav, R.S., Jangir, R.P. and Poonia, B.L. 2008. Effect of different weed management practices on weeds and yield of cumin. Annal. Arid Zone. 47:139-144.
16
Menalled, F.D.K.A., Buhler, D.D. and Liebman, M. 2005. Effects of composted swine manure on weed seedbank. Agr. Ecosyst. Environ. 111:63–69.
17
Mirzaei, R., Kambozia, J., Sabahi, H. and Mahdavi1, A. 2009. Effect of different organic fertilizers on soil physicochemical properties, production and biomass yield of tomato (Lycopersicon esculentum L.). Iranian J. Field Crops Res. 1:257-268. (In Persian with English Summary)
18
Naghedinia, N. 2006. Effect of irriation and manure level on cumin yield. MSc Thesis. Faculty of Ferdowsi University of Mashhad. (In Persian with English Summary)
19
Saborbilandy, M. 2002. Evolution effect of manure different levels in cumin yield in Gonabad town. National Congress First of Cumin, Sabzevar. (In Persian with English Summary)
20
Tilston, E.L., Pit, D., Fuller, M.P. and Groenhof, A.C. 2005.Compost increases yield and decreases take-all severity in winter wheat. J. Field Crops Res. 94:176–188.
21
Vahabi Mashak, F., Mir Said Hosseini, H., Sharfa, M. and Hatami, S. 2008. Investigation of the effects of spent mushroom compost (SMC) application on some chemical properties of soil and leachate. J. of Water Soil. 22(2):394-406. (In Persian with English Summary)
22
Vantine, M. and Verlinden, S. 2003. Organic weed management. WVA extension service.
23
Yin, L. Cai, Z. and Zhong, W. 2005. Changes in weed composition of winter wheat crops due to long-term fertilization. Agr. Ecosyst. Environ. 107:181–186.
24
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی اکولوژی جوانهزنی بذر و ظهور گیاهچۀ ساقترشک (Rumex crispus L.) و کوزه قلیانی (Silene conoidea L.)
به منظور بررسی اکولوژی جوانهزنی بذر و ظهور گیاهچۀ ساقترشک و کوزه قلیانی، آزمایشهایی در آزمایشگاه تحقیقاتی دانشکده کشاورزی دانشگاه بیرجند در پاییز و زمستان 1388 در قالب طرح بلوکهای کامل تصادفی با سه تکرار اجرا گردید. تیمارهای آزمایشی شامل نور (نور/تاریکی و تاریکی مداوم)، دماهای متناوب شب/روز (5/10، 10/20، 15/25، 20/30 و 25/35 درجه سانتیگراد(، تنش شوری (صفر (شاهد)، 10، 20، 40، 80، 160، 320 و 640 میلیمولار)، تنش خشکی (صفر (شاهد)، 1/0-، 2/0-، 4/0-، 6/0-، 8/0- و 1- مگاپاسکال)، pH (چهار تا ده) و عمق کشت (صفر تا چهار سانتیمتر) بودند. نتایج نشان داد که جوانهزنی بذور ساقترشک، تحت تاثیر شرایط نور/تاریکی و تاریکی مداوم قرار نگرفت. بذور ساقترشک در دامنه وسیعی از دماهای متناوب تست شده در دو رژیم نور/تاریکی و تاریکی مداوم بیش از 85 درصد جوانه زدند و جوانهزنی آن در دمای 5/10 درجه سانتیگراد متوقف شد. بذور علفهرز کوزه قلیانی در دامنه دماهای متناوب 15/25 درجه سانتیگراد و پایینتر در دو رژیم نور/تاریکی و تاریکی مداوم بیش از 70 درصد جوانهزنی داشتند، اما در دماهای بالاتر از 15/25 درجه سانتیگراد جوانهزنی به خصوص در شرایط نور/تاریکی کاهش محسوسی داشت. بذور ساقترشک و کوزه قلیانی تا شوری 160 میلیمولار بیش از 85 درصد جوانهزنی داشته و جوانهزنی آنها در پتانسیل اسمزی 8/0- مگاپاسکال به ترتیب 60 و 90 درصد بود. بذور ساقترشک و کوزه قلیانی در دامنۀ pH چهار تا ده حدود 90 درصد جوانه زدند. عمق دفن بذر، سبز شدن گیاهچههای ساقترشک و کوزه قلیانی را بطور معنیداری کاهش داد، به طوریکه از عمق بیشتر از سه سانتیمتر گیاهچهای سبز نشد و حداکثر سبز شدن (به ترتیب 98 و 7/74 درصد) مربوط به بذوری بود که در سطح خاک در زیر سه لایه کاغذ صافی کشت شدند.
https://ijws.areeo.ac.ir/article_1097_a865723aff3ca4b7adf7038ea8fe7166.pdf
2010-08-23
19
31
سبز شدن
شوری
خشکی
اسیدیته
عمق کشت
اسماعیل
ابراهیمی
1
کارشناسی ارشد
AUTHOR
سید وحید
اسلامی
2
استاد دانشگاه
AUTHOR
عباداله
مویدی شهرکی
3
کارشناسی ارشد
AUTHOR
Arnon, D. I. and Johnson, C. M. 1942. Influence of hydrogen ion concentrations on the growth of higher plants under controlled conditions. Plant Physiol. 17: 525–539.
1
Baskin, J. M. and Baskin, C. C. 1985. Does seed dormancy play a role in the germination ecology of Rumex crispus L. ? Weed Sci. 33: 340-343.
2
Baskin, J. M. and Baskin, C. C. 1987. A contribution to the germination ecology of Rumex crispus L. Bulletin of the Torrey Botanical Club. 105: 278-281.
3
Baskin, C. C. and Baskin, J. M. 1998. Seeds: Ecology, Biogeography, and Evaluation of Dormancy and Germination. San Diego, CA, Academic. 666p
4
Benvenuti, S. and Macchia, M. 1995. Hypoxia effect on buried weed seed germination.Weed Res. 35: 343-351.
5
Benvenuti, S., Macchia, M. and Mieli, S. 2001. Light, temperature and burial depth effects on Rumex obtusifolius L. seed germination and emergence. Weed Res. 41: 177-186.
6
Bond, W., Davies, G. and Turher, R. J. 2007. The biology and non-chemical control of broad-leavedock (Rumex obtusifolius L.) and curled dock (Rumex crispus L.). [http: // www.garden organic. org. Uk/organicweeds].
7
Cavers, P. B. 1974. Germination polymorphism in Rumex crispus L. The effects of different storage conditions on germination responses of seeds collected from individual plants. Can. J. of Bot. 52: 575-583.
8
Cavers, P. B. and Harper, J. L. 1964. Biological flora of the British Isles: Rumex obtusifolius L. and Rumex crispus L. J. Ecol. 52: 733-766.
9
Chachalis, D. and Ready, K. N. 2000. Factors affecting Campsis radicans seed germination and seedling emergence. Weed Sci. 48: 212-216.
10
Chauhan, B. S. and Johnson, D. E. 2008. Seed germination and seedling emergence of giant sensitiveplant (Mimosa invisa). Weed Sci. 56: 244-248.
11
Chauhan, B. S. and Johnson, D. E. 2009. seed germination and seedling emergence of synedrella (Synedrella nodiflora .) in a tropical environment. Weed Sci. 57: 36-42.
12
Chauhan, B. S., Gill, G. and Preston, C. 2006a. Factors affecting seed germination of annual sowthistle (Sonchus oleraceus) in southern Australia. Weed Sci. 54: 854–860.
13
Chauhan, B. S., Gill, G. and Preston, C. 2006b. Factors affecting seed germination of three horn bedstraw (Galium tricornutum).Weed Sci. 54: 471-477.
14
Cheam, A. H. and Code, G. R. 1995. The biology of Australian weeds, 24: Raphanus raphanistrum L. Plant Prot. Q. 10: 2-13.
15
Ebrahimi, E., Eslami, S. V., Mahmoodi, S. and Jami Al-Ahmadi, M. 2009. Factors affecting Ceratocarpus arenarius L. (Bluk.) seed germination and seedling emergence. Weed Res Journal, (Islamic Azad University Karaj, Iran) 2: 25-36. .(In Persian with English summary).
16
Hongo, A. 1989. Survival and growth of seedling of Rumex obtosifolius L. and Rumex crispus L. in newly sown grassland. Weed Res. 29: 7-12.
17
Koger, C. H., Reddy, K. N. and Poston, D. H. 2004. Factors affecting seed germination, seedling emergence, and survival of texasweed (Caperonia palustris).Weed Sci. 52: 989-995.
18
Le Deunff, Y. and Chaussant, R. 1968. Etud de la dormance secondaire des semences chez R. C L. Ann. Physiol. 10 : 227-236.
19
Mennan, H. and Ngouajio, M. 2006. Seasonal cycles in germination and seedling emergence of summer and winter populations of catchweed bedstraw (Galium aparine) and wild mustard (Brassica kaber). Weed Sci. 54: 114-120.
20
Miller, R. W. and. Donahue, R. L. eds. 2004. Soil water properties. Pages 62–97 in Soils in Our Environment. Upper Saddle River, New Jersey: Prentice Hall.
21
Monaco, T. J. and Cumbo, E. L. 1972. Growth and development of curly dock and broadleafdock. Weed Sci. 20: 64-67.
22
Nasir, E. and Ali, S. I. 1986. Flora of Pakistan, Fakhri Printing Press, No. 175, P. 56.
23
Noronha, A., Andersson, L. and Milberg, P. 1997. Rate of change in dormancy level and Light requirement in weed seeds during stratification. Annal. Bot. 800: 795-801.
24
Pay, A. 2008. Ecological studies of Rumex crispus L. propagation, competition and demography. Doctoral Thesis. Swedish University of Agricultural Sciences Uppsala. Pp43.
25
Rashed Mohassel, M. H., Najafi, H. and Akbarzadeh, M. D. 2009. Weed biology and control. Ferdowsi University of Mashhad Press, Second Edition, Pp404.(In Persian with English summary)
26
Roberts, E. H. and Totterdell, S. 1981. Seed dormancy in Rumex species in response to environmental factors. Plant Cell Environ. 4: 97-106.
27
Rollin, P. 1972. Phytochrome control of seed germination. Pages 229–257 in K. Mitrakos and W. Shropshire Jr., eds. Phytochrome. New York: Academic.
28
Samimy, C. and Khan, A. A. 1983. Secondary dormancy, growth- regulator effects, and embryo growth potential in curly dock (Rumex crispus) seeds. Weed Sci. 31:153-158.
29
Shimi, P. and Termah, F. 2006. Atlas of important weeds of Iran. Iranian Plant Protection Research Institute Press. Pp152.(In Persian with English summary)
30
Tanji, K. K. and Kielen, N. C. 2002. Agricultural Drainge Water Mnaagement in Arid and Semi-Arid Areas. Fao Irrigation and Drainage Papper 61. Rome Italy. Food and Agriculture Organization of the United Nations. 202p.
31
Teuton, T. C., Brecke, B. J., Unruh, J. B., Mac Donald, G. E., Miller, G. L. and Ducar, J. T. 2004. Factors affecting seed germination of tropical signalgrass (Urochloa subquadripara). Weed Sci. 25: 376-381.
32
Wang, J., Ferrell, J., MacDonald, G. and Sellers, B. 2009. Factors affecting seed germination of cadillo (Urena lobata). Weed Sci. 57: 31-35.
33
Weaver, S. E. and Cavers, P. B. 1979. The effects of date of emergence and emergence order on seedling survival rates in Rumex crispus L. and Rumex obtusifolius L. Can. J. Bot. 57: 730-738.
34
Zaller, J. G. 2004. Ecology and non-chemical control of Rumex crispus L. and Rumex obtusifolius L. (Polygonaceae) a review Weed Res. 44: 414-432.
35
ORIGINAL_ARTICLE
مقایسه روش مولکولی dCAPS با روشهای رایج برای تشخیص مقاومت علف هرز یولاف وحشی (Avena ludoviciana Durieu.) نسبت به علفکش کلودینافوپ پروپارژیل
به منظور مقایسه روش ملکولی با روش های رایج برای تشخیص علف هرز یولاف وحشی مقاوم به علفکش کلودینافوپ پروپارژیل، 17 توده مشکوک به مقاومت و یک توده حساس از طریق چهار روش غربال گیاه کامل در گلخانه، زیست سنجی گیاه کامل در گلخانه، زیست سنجی گیاهچه در پتری و روش مولکولی dCAPS مورد مطالعه قرار گرفتند. بر اساس نتایج بدست آمده بین آزمایش غربال گیاه کامل در گلخانه، زیست سنجی گیاه کامل در گلخانه و زیست سنجی گیاهچه در پتری همخوانی کامل برقرار بود. البته درجه مقاومت محاسبه شده تودهها در روش زیستسنجی بذر به دلیل تفاوت شرایط آزمایش، پایینتر از روش زیست سنجی گیاه کامل در شرایط گلخانهای بود. آزمایشهای مولکولی برای تشخیص موتاسیون در موقعیت 1781 (Ile1781Leu) و 2041 (Ile2041Asn) آنزیم استیل کوآنزیم آکربوکسیلاز نیز حاکی از آن بود که از بین 17 توده یولاف وحشی مقاوم به علفکش، علت مقاومت 8 توده (44 درصد از توده های مورد مطالعه) جهش در موقعیت 1781 بود و در هیچ یک از تودهها جهش در موقعیت 2041 مشاهده نشد. در مجموع به نظر میرسد در بیوتیپهایی که در آزمایش از طریق روشهای رایج مقاوم، ولی در آزمایش ملکولی حساس تشخیص داده شدند، جهش در نقطه دیگری اتفاق افتاده است و یا مکانیزم مقاومت آنها مبتنی بر متابولیسم است.
https://ijws.areeo.ac.ir/article_1098_3dc40e106be2e5ba0017cfd463b7c202.pdf
2010-08-23
33
52
علفهای هرز باریک برگ
بازدارندههای ACCase
سنجش گیاه کامل
زیستسنجی بذر
اسکندر
زند
1
محقق
AUTHOR
آرش
رزمی
2
کارشناسی ارشد
AUTHOR
فاطمه
بنا کاشانی
3
محقق
AUTHOR
فهیمه
نظری
4
محقق
AUTHOR
جاوید
قرخلو
gherekhloo@gau.ac.ir
5
محقق
AUTHOR
Adkins, S., Wills, W. D., Boersma, M., Walker, S. R., Robinson, G., McLeod, R. J. and Einam, J.P. 1997. Weed resistance to chlorsulfuron and atrazine from the north-east grain region of Australia. Weed Res. 37: 343-349.
1
Beckie, H. J., Heap, I. M., Smeda, R. J. and Hall, L. M. 2000. Screening for herbicide resistance in weeds. Weed Technol. 14: 428-445.
2
Bena Kashani, F., Zand, E. and Mohammadalizadeh, H. 2005. Quick test to evolution resistance of wild oat (Avena luduviciana) to aryloxyphenoxypropionate herbicides using seed bioassay. Proceeding of the 1st Iranian Weed Science Congress. Iranian Research Institute of Plant Protection. Tehran. 492-495
3
Corbett, C. L. and Tardif, F. J. 2006. Detection of resistance to acetolactate synthase inhibitors in weeds with emphasis on DNA-based techniques: a review. Pest Manage Sci, 62: 584-597.
4
Cullings, K. W. 1992. Design and testing of a plant-specific PCR primer for ecological and evolutionary studies. Mol Ecol. 1: 233-240.
5
De Prado, R., Gonzalez-Gutierrez, J., Menendez, J., Gasquez, J., Gronwald, J. W. and Gimene-Espinoza, R. 2000. Resistance to acetyl CoA carboxylase-inhibiting herbicides in Lolium multiflorum. Weed Sci. 48: 311-318.
6
Deihimfard, R., Zand, E., Mahdavi Damghani, A. M. and Soufizadeh, S. 2007. Herbicide risk assessment during the wheat self-sufficient project in Iran. Pest Manage Sci. 63: 1036-1045.
7
Delye, C. 2005. Weed resistance to acetyl coenzyme A carboxylase inhibitors: an update. Weed Sci. 53: 728-746.
8
Gherekhlo, J. and Zand, E. 2010. A short review on conducted herbicide-resistance researches in Iran. Key articles of 11th Iranian Crop Science Congress. Shahid Beheshti University. Tehran. 110-125.
9
Kaundun, S. S. and Windass, J. D. 2006. Derived cleaved amplified polymorphic sequence, a simple method to detect a key point mutation conferring acetyl CoA carboxylase inhibitor herbicide resistance in grass weeds. Weed Res. 46: 34-39.
10
Konieczny, A. and Ausubel, F. M. 1993. A procedure for mapping Arabidopsis mutations using codominant ecotype-specific PCR-based markers. Plant J. 4: 403–410.
11
Moss, S. R., Clarke, J. H., Blair, A. M., Culley, T. N., Read, M. A., Ryan, P. J. and Turner, M. 1999. To occurrence of herbicide-resistance grass-weeding in the United Kingdom and a new system for designating resistance in screening assay.Proceeding of Brighton Crop Protection Conference on Weeds. Hampshire, UK: BCPC. 179-184.
12
Moss, S. R., Perryman, S. A. M. and Tatnell, L. V. 2007. Managing herbicide-resistant black grass (Alopecurus myosuroides): Theory and practice. Weed Technol. 21: 300-309.
13
Neff, M. M., Neff, J. D., Chory, J. and Pepper, A. E. 1998. dCAPS, a simple technique for the genetic analysis of single nucleotide polymorphisms: experimental applications in Arabidopsis thaliana genetics. Plant J. 14: 387–392.
14
Preston, C. 2009. Herbicide resistance: Target site mutation. In: C. Neal Stewart Jr. Weedy and Invasive Plant Genomics. Wiley Blackwell. Pp. 127-148.
15
Ritz, C. and Streibig, J. C. 2005. Bioassay analysis using R. J Stat Softw. 12: 1-21.
16
Sandral, G. H., Dear, B. S., Pratley, J. E. and Cullis, B. R. 1997. Herbicide dose response rate response curve in subterranean clover determined by a bioassay. Aust J Exp Agr. 37: 67-74.
17
Streibig, J. C. 1988. Herbicide bioassay. Weed Res. 28: 479-4840.
18
Tal, A., Kotoula, E. and Rubin, B. 2000. Seed bioassay to detect grass weeds resistance to acetyl coenzyme-A inhibiting herbicides. Crop Protect. 467-472.
19
Yu, Q., Zheng, M., Owen, M., Sattin, M. and Powles, S. B. 2007. Diversity of acetyl- coenzyme A carboxylase mutations in resistance Lolium population: Using clethodim. Plant Physiol. 145: 547-558.
20
Zand, E., Baghestani, M. A., Nezamabadi, N. and Shimi, P. 2010. The most important herbicides and weeds of Iran. Iran University Press.
21
Zand, E. and Beckie, H. 2002. Competitive ability of hybrid and open pollination canola (Brassica napus L.) with wild oat (Avena fatua L.).Canadian J. of Plant Sci. 82: 473-480.
22
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی اثرات بقایای شبیه سازی شده علفکش سولفوسولفوران (آپیروس) در خاک بر هفت گیاه زراعی
به منظور بررسی حساسیت گیاهان زراعی نخود، لوبیا، عدس، ذرت، کلزا، چغندرقند و گوجهفرنگی به بقایای علفکش سولفوسولفوران در خاک، آزمایشی گلخانهای به صورت فاکتوریل در قالب طرح کاملا تصادفی و در سه تکرار دردانشکده کشاورزی دانشگاه فردوسی مشهد انجام شد. عوامل مورد بررسی شامل گیاهان زراعی (نخود، لوبیا، عدس، ذرت، کلزا، چغندرقند و گوجهفرنگی) و غلظتهای شبیهسازی شده علفکش آپیروس در خاک (0، 12/0، 3/0 ،6/0، 2/1، 4/2 و 6/3 میکروگرم در کیلوگرم خاک) بودند. یک هفته پس از ظهور گیاهان، درصد سبز شدن آنها تعیین و 30 روز بعد از سبزشدن درصد بقا و زیست توده اندام هوایی و ریشه آنها اندازهگیری شدند. برای ارزیابی پاسخ گیاهان مورد مطالعه، پس از تجزیه واریانس دادهها، پاسخ گیاهان مذکور به بقایای علفکش سولفوسولفوران از طریق برازش زیستتوده اندام هوایی به معادله لگاریتمی سیگموئیدی 4 پارامتری و محاسبه غلظت لازم برای 50 درصد کاهش زیست توده انجام شد. نتایج نشان دادند که درصد سبز شدن، بقا و زیست توده تولید شده ریشه و ساقه گیاهان مورد مطالعه تحت تاثیر معنیدار بقایای سولفوسولفوران قرار گرفت. با افزایش غلظت سولفوسولفوران در خاک پارامترهای مذکور در تمام گیاهان به طور معنیداری کاهش یافت. در کمترین غلظت سولفوسولفوران ، متوسط تلفات زیست توده اندام هوایی و ریشه به ترتیب، 30/19 و 93/24 درصد و در بیشترین غلظت آن 00/92 و 20/92 درصد بود. بر اساس نتایج آزمایش، گیاهان مورد مطالعه حساسیت متفاوتی به بقایای سولفوسولفوران داشتند. بطوریکه بیشترین (3/75 و 96/79 درصد) و کمترین (40/54 و 00/42 درصد) تلفات زیست توده اندام هوایی و ریشه به ترتیب در گوجهفرنگی و چغندرقند مشاهده شدند. بر اساس شاخص ID50 نخود، لوبیا و ذرت (05/0 میکروگرم در کیلوگرم خاک) و گوجه فرنگی (008/0 میکروگرم در کیلوگرم خاک) به ترتیب متحملترین و حساسترین گیاهان زراعی به بقایای سولفوسولفوران در خاک بودند. با توجه به نتایح حاصل اثرات بقایای سولفوسولفوران درگیاهان مورد مطالعه در سطح کم و متوسط بقایای آن در خاک رخ میدهد. بر اساس شاخص ID50 گیاهان زراعی مذکور از نظر حساسیت به بقایای سولفوسولفوران به صورت: گوجهفرنگی> چغندرقند> کلزا> عدس> ذرت= لوبیا= نخود، طبقه بندی شدند.
https://ijws.areeo.ac.ir/article_1099_c23b1fe68969630554651226fc35f8ae.pdf
2010-08-23
53
64
چغندرقند
ذرت
عدس
کلزا
گوجهفرنگی
لوبیا
نخود
ابراهیم
ایزدی
e-izadi@um.ac.ir
1
محقق
AUTHOR
محمد حسن
راشد محصل
2
محقق
AUTHOR
معصومه
دهقان
3
کارشناسی ارشد
AUTHOR
قدریه
محمودی
4
کارشناسی ارشد
AUTHOR
Aminpanah, H., Sorooshzadeh, A., Zand, H. and Momeni, A. 2009. Investigation of Light Extinction Coefficient and Canopy Structure of More and Less Competitiveness of Rice Cultivars (Oryza sativa) Against Barnyardgrass (Echinochloa crus-galli). Elec. J. Crop. Prod. 2(3): 69-84.
1
Beheshti, S.A. and Mousavi Sarvine, S.R. 2009. Pigweed (Amaranthus retroflexus L.) Competition effects on grain and biomass yield of Sorghum (Sorghum bicolor L. oench). Iran. Seed and Plant Prod. J. 25(2): 33-44.
2
Birch,C.J., Hammer, G.L. and Rickert, K.G. 2005. Dry matter accumulation and procedures for use in crop modelling. Aust. J. Agric. Res. 50(4): 513-527.
3
Bosnic, A.C. and Swanton, C.J. 1997. Influence of barnyard grass (Echinochloa crus-galli) time of Emergence and density on corn (Zea mays L.). Weed Sci. 47: 551-556.
4
Cousens, R.D., 1985. A simple model relating yield loss to weed density. An. Appl. Biol. 107: 239–252.
5
Dalley, D.C., Bernards, L.M. and Kells, J. J. 2006. Effect of removal timing and row spacing on soil moisture in corn (Zea mays L).Weed Tech. 20: 399-409.
6
Graham, D.L., Steiner, J.L. and Wicse, A.F. 1988. Light absorption and competition in mix sorghum-pigweed communities. Agron. J. 80: 415-418.
7
Francis, F., Kiniry, J.F., Board, E.J., and Reicosky, C.D. 1996. Row spacing effects on light extinction coefficient of corn, Sorghum, Soybean, and sunflower. Agron. J. 88: 185-190.
8
Knezevic, Z.S., Weise, S.F. and Swanton, C.I. 1995. Comparision of empirical models depicting density of Amaranthus retroflexus L. and relative leaf area as predictors of yield loss in Maize (Zea Mays L.). Weed Res. 35: 207-214.
9
Knezvic, Z.S., Horak, M.I. and Randerlip, R.L. 1997. Relative time of redroot pigweed (Amaranthus retroflexus L.) emergence in critical in pigweed-sorghum competition. Weed Sci. 45: 502-508.
10
Knezevic, Z.S., Horak, M.J. and Vanderlip, R.L. 1999. Estimates of physiological determinants for redroot pigweed. Weed Sci. 47: 291-296.
11
Knezevic. Z.S., Weise, S.F. and Swanton, C.J. 2003. Interference of redroot prgweed (Amaranthuo retroflexus L.) in corn (Zea mays L.). Weed Sci. 42: 568-578.
12
Legerc, A.M. and Schreiber, M. 1999.Competition of light, Water and nitrogen by soybean row with and density of redroot pigweed (Amaranths retroflexus L.). Weed Sci. 37: 84-92.
13
Major, D.J. and Otegu, B.W. 1996. Leaf area, light interception and development in maize radiation use efficiency. Agron. J. 83:895-903.
14
Sangakkara,V.R. and Stamp, P. 2006. Influence of different weed categories on growth and yields of maize (Zea mays L.) grown in a minor (dry) season of the humid. J. Plant Dis .Prot. 113: 81-85.
15
Scarsrook C.E. and Doss, B.O. 1998. Leaf Area Index and radiation as related to corn yield. Agron. J. 87: 456-563.
16
Strobel, G. A. 1991. Biological control of weed, Scientific American. 72-78.
17
Tollenaar, M. and Aguilar, M. 1992. Radiation use efficiency of old and new maize hybrid. Agron. J. 84: 536-541.
18
ORIGINAL_ARTICLE
تاثیر تراکم بوته و زمان سبز شدن تاجخروس بر کارایی استفاده از نور، ضریب خاموشی و توزیع سطح برگ و ماده خشک در تاج پوشش ذرت
بهمنظور بررسی کارایی استفاده از نور، ضریب خاموشی و همچنین بررسی الگوی توزیع ماده خشک و سطح برگ در کانوپی ذرت در شرایط رقابت با تاج خروس آزمایشی در مزرعه تحقیقاتی مؤسسه اصلاح و تهیه نهال و بذر کرج در سال 1380 انجام شد. در این آزمایش اثر پنج تراکم تاجخروس (0، 3، 5، 8 و10 بوته در متر ردیف) و سه زمان سبز شدن آن (همزمان با ذرت، در مرحله 2-3 برگی ذرت، مرحله 4-5 برگی ذرت) اجرا شد. آزمایش به صورت فاکتوریل در قالب طرح بلوکهای کامل تصادفی با سه تکرار انجام شد. نتایج نشان داد که تشدید رقابت بین گونهایی در اثر رویش همزمان تاج خروس و ذرت، به طور معنیداری باعث هدایت بخش عمدهای از سطح برگ و وزن خشک ذرت به طبقات بالای کانوپی شد و همچنین در این تیمار به علت کاهش معنیدار شاخصسطح برگ ذرت و افزایش سطح برگ تاج خروس میزان کارایی استفاده از نورکاهش و ضریب خاموشی درطبقات پایینی کانوپی افزایش یافت. هرچه تراکم تاجخروس بیشتر و فاصله زمانی بین رویش علف هرز و ذرت کمتر شد، افزایش ضریب خاموشی شدیدتر گردید، بهطوریکه بیشترین مقدار این صفت (65/0) در تیمار ظهور همزمان تاج خروس با ذرت بدست آمد. افت عملکرد ذرت دراین تیمار 34 درصد بود که با تاخیر رویش تاجخروس تا مرحله 3-2 برگی و 5-4 برگی ذرت به ترتیب به 25 و 12 درصد کاهش یافت. نتایج این پژوهش نشان داد که جهت کاهش خسارت علفهایهرز در مزرعه ذرت، کنترل علفهای هرز تا مرحله 4-5 برگی ذرت که همراه با افزایش سرعت رشد ذرت میباشد، ضروری است.
https://ijws.areeo.ac.ir/article_1100_a452ddaad03ccdafce8e1fefaedf9bfc.pdf
2010-08-23
65
77
رقابت
درصد افت عملکرد
شاخص برداشت
تاجخروس
اصغر
رحیمی
1
استاد دانشگاه
AUTHOR
مجید
آقا علیخانی
2
استاد دانشگاه
AUTHOR
Aminpanah, H., Sorooshzadeh, A., Zand, H. and Momeni, A. 2009. Investigation of Light Extinction Coefficient and Canopy Structure of More and Less Competitiveness of Rice Cultivars (Oryza sativa) Against Barnyardgrass (Echinochloa crus-galli). Elec. J. Crop. Prod. 2(3): 69-84.
1
Beheshti, S.A. and Mousavi Sarvine, S.R. 2009. Pigweed (Amaranthus retroflexus L.) Competition effects on grain and biomass yield of Sorghum (Sorghum bicolor L. oench). Iran. Seed and Plant Prod. J. 25(2): 33-44.
2
Birch,C.J., Hammer, G.L. and Rickert, K.G. 2005. Dry matter accumulation and procedures for use in crop modelling. Aust. J. Agric. Res. 50(4): 513-527.
3
Bosnic, A.C. and Swanton, C.J. 1997. Influence of barnyard grass (Echinochloa crus-galli) time of Emergence and density on corn (Zea mays L.). Weed Sci. 47: 551-556.
4
Cousens, R.D., 1985. A simple model relating yield loss to weed density. An. Appl. Biol. 107: 239–252.
5
Dalley, D.C., Bernards, L.M. and Kells, J. J. 2006. Effect of removal timing and row spacing on soil moisture in corn (Zea mays L).Weed Tech. 20: 399-409.
6
Graham, D.L., Steiner, J.L. and Wicse, A.F. 1988. Light absorption and competition in mix sorghum-pigweed communities. Agron. J. 80: 415-418.
7
Francis, F., Kiniry, J.F., Board, E.J., and Reicosky, C.D. 1996. Row spacing effects on light extinction coefficient of corn, Sorghum, Soybean, and sunflower. Agron. J. 88: 185-190.
8
Knezevic, Z.S., Weise, S.F. and Swanton, C.I. 1995. Comparision of empirical models depicting density of Amaranthus retroflexus L. and relative leaf area as predictors of yield loss in Maize (Zea Mays L.). Weed Res. 35: 207-214.
9
Knezvic, Z.S., Horak, M.I. and Randerlip, R.L. 1997. Relative time of redroot pigweed (Amaranthus retroflexus L.) emergence in critical in pigweed-sorghum competition. Weed Sci. 45: 502-508.
10
Knezevic, Z.S., Horak, M.J. and Vanderlip, R.L. 1999. Estimates of physiological determinants for redroot pigweed. Weed Sci. 47: 291-296.
11
Knezevic. Z.S., Weise, S.F. and Swanton, C.J. 2003. Interference of redroot prgweed (Amaranthuo retroflexus L.) in corn (Zea mays L.). Weed Sci. 42: 568-578.
12
Legerc, A.M. and Schreiber, M. 1999.Competition of light, Water and nitrogen by soybean row with and density of redroot pigweed (Amaranths retroflexus L.). Weed Sci. 37: 84-92.
13
Major, D.J. and Otegu, B.W. 1996. Leaf area, light interception and development in maize radiation use efficiency. Agron. J. 83:895-903.
14
Sangakkara,V.R. and Stamp, P. 2006. Influence of different weed categories on growth and yields of maize (Zea mays L.) grown in a minor (dry) season of the humid. J. Plant Dis .Prot. 113: 81-85.
15
Scarsrook C.E. and Doss, B.O. 1998. Leaf Area Index and radiation as related to corn yield. Agron. J. 87: 456-563.
16
Strobel, G. A. 1991. Biological control of weed, Scientific American. 72-78.
17
Tollenaar, M. and Aguilar, M. 1992. Radiation use efficiency of old and new maize hybrid. Agron. J. 84: 536-541.
18
ORIGINAL_ARTICLE
مقاومت تودههای علفهرز یولاف وحشی (Avena ludoviciana Durieu.) به علفکش مزوسولفورون + یدوسولفورون
به منظور بررسی مقاومت هشت تودة یولاف وحشی (Avena ludoviciana) مشکوک به مقاومت جمعآوری شده از مزارع گندم استان خوزستان به علفکش مزوسولفورون+یدوسولفورون، آزمایشهای زیستسنجی گیاه کامل و زیستسنجی بذر (غربالگری و دز- پاسخ) انجام شد. این آزمایش طی سالهای 1388 و 1389 در بخش علفهای هرز مؤسسة تحقیقات گیاهپزشکی کشور انجام شد. چهار هفته پس از مصرف علفکش در آزمایش غربال در گلدان با دز توصیه شده و در دز-پاسخ با دامنةدز 1 تا 32 برابر دز توصیه شده در مرحلة دو تا چهار برگی، اندازهگیری درصد وزن تر، وزن خشک، و تعداد گیاه زنده مانده، و نمرهدهی چشمی انجام شد. در زیست سنجی بذر در پتری ، هفت روز پس از تیمار بذرهای جوانه زدة تودة حساس با علفکش، با اندازهگیری طول اندام هوایی دز تفکیککننده را تعیین و سپس در آزمایشهای غربالگری و دز-پاسخ واکنش کلیة تودهها نسبت به آن سنجیده شد. در این آزمایش، مقاومت چهار تودة KHI، KHB ، KHC، و KHA بر اساس روش ادکینز و روش موس مشخص شد. این نتایج در آزمایش زیستسنجی بذر در پتری نیز تأیید شد. بنابر نتایج این آزمایش، نخستین مقاومت یولاف وحشی به علف کش شوالیه(مزوسولفورون + یدوسولفورون) در کشور به ثبت رسید.
https://ijws.areeo.ac.ir/article_1101_5684249a54bf6860d2243f77bd8bcd34.pdf
2010-08-23
73
93
بازدارندههای ALS
مقاومت به علفکش
گندم
زهره
آقاجانی
1
استاد دانشگاه
AUTHOR
اسکندر
زند
2
محقق
AUTHOR
محمد علی
باغستانی
3
محقق
AUTHOR
محمد جواد
میرهادی
4
استاد دانشگاه
AUTHOR
Adkins, S. W., Wills, D., Boersma, M., Walker, S. R., Robinson, G., Mcleod, R. J. and Einam, J. P. 1997. Weeds resistant to chlorsulfuron and atrazine from the north-east grain region of Australia. Weed Res. 37:343-349.
1
Beckie, H. J. 2007. Beneficial management practices to combat herbicide-resistant grass weeds in the northern Great Plains. Weed Technol. 21: 290-299.
2
Beckie, H. J., Heap, I. M., Smeda, R. J. and Hall, L. M. 2000. Screening for herbicide resistance in weeds. Weed Technol. 41: 523-534.
3
Beckie, H. J., Friesen, L. F., Nawolsky, K. M. and Morrison, I. N. 1990. A rapid bioassay to detect trifluralin-resistant green foxtail (Setaria viridis) across Saskatchewan ecoregion. Weed Technol.,13:626-631.
4
Bellinder, R. R., Gummesson, G. and Karlson, C. 1994. Percentage driven government mandates for pesticide reduction: the Swedish model. Weed Technol. 8:350-359.
5
BenaKashani, F., Zand, E. and Alizadeh, H. M. 2006. Investigation on herbicide resistance of wild oat (Avena ludoviciana) biotypes in Fars. In: Proceeding of the 1st Iranian Weed Sci. Congress, Tehran, Iran 488-491.(In Persian with English Summary).
6
Cirujeda, A., Recasens, J. and Taberner, A. 2001. A qualitative quick-test for detection of herbicide resistance to tribenuron-methyle in Papaver rhoeas. Weed Res. 41: 523-534.
7
Deihim Fard, R. and Zand, E. 2005. Evaluating environmental impacts of herbicides on wheat agroecosystems in the provinces of Iran using EIQmodel. Environmental Sci.6:1-9.
8
Elahi Fard, E., Rashed, M. H., Zand, E. and Nassiri, M. 2006. Little seed canarygrass (Phalaris minor) resistance to fenoxaprop p ethyl. In: Proceeding of the 1st Iranian Weed Sci. Cong, Tehran, Iran 443-446. .(In Persian with English Summary).
9
Gherekhloo, J. 2008. Tracing resistant Phalaris minor populations and studying their resistance mechanisms to Aryloxyphenoxy propionate herbicides in Fars and Golestan wheat fields. Ph. D. thesis of weed science. Ferdowsi Univercity of Mashhad. 190p. .(In Persian with English Summary).
10
Gherekhloo, J. and Zand, E. 2010. A short review on conducted herbicide-resistance resarches in Iran. 11th Iranian Congress of agronomy and plant breeding. Environmental Science research Institute, Shahid Beheshti University. Key article 110-125.(In Persian with English summary).
11
Heap, I. M. 2006. International survey of herbicide resistant weeds. www.weedscience.com. Accessed: April 28, 2010.
12
Heap, I. M. 2010. International Survey of herbicide resistant weeds. http://www.weedscience.com. Accessed: April 28, 2010.
13
Kuk, Y. I., Jung, H. I., Kwon, O. D., Lee, D. J., Burgos, N. R. and Guh, J. O. 2003. Rapid diagnosis of resistance to sulfonylurea herbicides in monocharia (Monocharia vaginalis). Weed Sci. 51:305-311.
14
Mallory-Smith, C. A., Thill, D. C. and Dial, M. J. 1990. Identification of sulfonylurea herbicide-resistant prickly lettuce (Lactuca serriola). Weed Technol. 4: 163-168.
15
Moss, S. R. 1995. Techniques for determining herbicide resistance. Brighton Crop Prot. Conf. Weeds. 2:547-556.
16
Moss, S. R., Perryman, S. A. M. and Tatnell, L.V. 2007. Managing Herbicide-Resistant theory and Practice. Weed Technol. 21:300-309
17
Murray, B. G., Friesen, L. F., Beaulieu, K. J. and Morrison, I. N. 1996. A seed bioassay to identify acetyl-COA carboxylase inhibitor resistant wild oat (Avena fatua) populations. Weed Technol., 10:85-89.
18
Owen, M. J., Walsh, M. J., Llewellyn, R. S., Powles, S. B. 2003. Widespread occurrence of multiple herbicide resistance in Western Australian annual ryegrass (Lolium rigidum) populations. Australian Journal of Agriculture Res. 58: 711-718.
19
Rastgoo, M., Rashed, M. H., Zand, E. and Nassiri, M. 2006. Resistance of winter Wild oat (Avena ludoviciana Durieu.) to aryloxyphenoxy propionate herbicides in wheat fields of Khuzestan province: first screening test. Iranian journal of Weed Sci. 2:96-104.
20
Sandral, G. H., Dear, B. S., Pratley, J. E. and Cullis, B. R. 1997. Herbicide dose response rate curve in subterranean clover determined by a bioassay. Australian J. of Experimental Agric. 37: 67-74.
21
Streibig, J. C. 1988. Herbicide bioassay. Weed Res. 28:479-484.
22
Tal, A., Zarka, S. and Rubin, B. 1996. Fenoxaprop-P resistance in Phalaris minor conferred by an intensive acetyl coenzyme Acarboxylase. Pesticide Biochem. & Physiol. 56:1134-140.
23
Zand, E., Bena Kashani, F., Baghestani, M. A., Meknali, A., Minbashi, M., Soufizadeh, S. and Deihimfard, R. 2007. Investigating the distribiotion of clodinafop propargyl resistant Wild oat (Avena ludoviciana) populations in south western Iran. Environmental Sci. 4:17-26.
24
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی مقاومت عرضی به علفکشهای بازدارنده ACCase در تودههای یولاف وحشی (Avena ludoviciana Durieu.) جمعآوری شده از خوزستان و امکان کنترل شیمیایی آنها
مقاومت عرضی 13 توده یولاف وحشی(Avena ludoviciana Durieu.) جمعآوری شده از استان خوزستان به علفکشهای بازدارنده استیل کوآنزیم-آ-کربوکسیلاز ) (ACCase با استفاده از روشهای مختلف در سال 89-1388 در بخش تحقیقات علفهای هرز موسسه تحقیقات گیاههپزشکی کشور مورد بررسی قرار گرفت. همچنین آزمایش جداگانهای به منظور تعیین علفکشهای جایگزین برای کنترل تودههای مقاوم صورت گرفت. آزمایشها شامل: غربال توده ها، واکنش به دز تودهها در برابر علفکش کلودینافوپ- پروپارژیل، واکنش تودهها به گروههای مختلف شیمیایی علفکشهای بازدارنده ACCase و تاثیر علفکشهای گروههای مختلف بر تودههای مقاوم بود. در بررسی روشهای مختلف مشخص گردید که درصد کاهش وزن تر و درصد خسارت بر اساس ارزیابی چشمی بهترین صفات برای ارزیابی تودهها از نظر مقاومت و میزان تاثیر علفکش ها می باشند. بررسی مقاومت عرضی تودهها نیز نشان داد که تودههای مورد بررسی از نظر مقاومت به گروههای مختلف علفکشهای بازدارنده ACCase الگوهای متنوعی داشتند. نتایج بدست آمده از بررسی تاثیر علفکشهای مختلف نیز نشان داد که علفکشهای بازدارنده استولاکتات سینتاز مورد بررسی (یدوسولفورون+مزوسولفورون+ مفن پیر دی اتیل، سولفوسولفورون+ متسولفورون و یدوسولفورون+مزوسولفورون + مفن دی اتیل) توانستند کنترل خوبی بر تودههای مقاوم داشته باشند. بویژه تاثیر کنترلی علفکش یدوسولفورون+مزوسولفورون + مفن دی اتیل بر تودههای مقاوم بسیار قابل توجه بود بطوری که این علفکش توانست 80% تودههای مقاوم را در حد خوب یا مطلوب و 20% را کمی مطلوب کنترل کند.علف کش های پینوکسادن و مخلوط پینوکسادن+ کلودینافوپ-پروپارژیل نیز تودههای مقاوم را در حد کمی مطلوب کنترل کردند، اما به دلیل اینکه در بسیاری از تودهها نشانههای مقاومت پدیدار شده است و شایدکارایی علفکش کاهش یابد، بهتر است در استفاده از آنها دقت لازم صورت گیرد.
https://ijws.areeo.ac.ir/article_1102_acfd7c784e1e9315a41d60297d773ef7.pdf
2010-08-23
95
112
استولاکتات سینتاز
پینوکسادن
سولفوسولفورون+ متسولفورون
علفکش جایگزین
گندم
یدوسولفورون+ مزوسولفورون + مفن دی اتیل
فاطمه
بناکاشانی
1
محقق
AUTHOR
حمید
رحیمیان مشهدی
hrahimian@hotmail.com
2
محقق
AUTHOR
اسکندر
زند
3
محقق
AUTHOR
حسن
علیزاده
malizade@ut.ac.ir
4
محقق
AUTHOR
محمد رضا
نقوی
5
محقق
AUTHOR
Adkins, S. W., Wills, D., Boersma, M., Walker, S. R., Robinson, G. Mcleod, R. J. and Einam, J. P. 1997. Weeds resistant to chlorsulfuron and atrazine from the north-east grain region of Australia. Weed Res. 37: 343-349.
1
Aghajani, Z. 2010. Investigation of multiple-resistance of wild oat (Avena ludoviciana) populations collected from Khuzestan province to ACCase and ALS Inhibitor herbicides. MSc thesis, Azad Islamic University. .(In Persian with English Summary).
2
Ball, D. A., Frost, S. M. and Bennett, L. H. 2007. ACCase-Inhibitor herbicide Resistance in downy brome (Bromus tectorum) in Oregon. Weed Sci. 55: 91–94.
3
Beckie, H. J., Hall, L. M. and Tardif, F. J. 2001. Impact and management of herbicide-resistant weeds in Canada. Brighton. Crop Protection Conference Weeds. Farnham, BC PC. 747-754.
4
Beckie, H. J., Heap, I. M., Smeda, R. J. and Hall, L. M. 2000. Screening for herbicide resistance in weeds. Weed Technol. 14: 428–445.
5
BenaKashani, F., E. Zand., and H. M. Alizadeh 2010. Study on diclofop-methyl resistance in wild oat (Avena ludoviciana Durieu.): A comparison between the whole plant bioassay and the seed bioassay. Appl. Entomo. Phyt. Pathol. 78: 1-14. .(In Persian with English Summary).
6
Bena Kashani, F., Zand E. and Alizadeh, H. M. 2006. Resistance of wild oat (Avena ludoviciana) biotypes to Clodinafop-propargil herbicide. Entomol Phyto Pathol. 2: 127-151. .(In Persian with English Summary).
7
Bourgeois, L. and Morrison, I. N. 1997. A survey of ACCase inhibitor resistant wild oat in a high risk township in Manitoba. Can. J. Plant Sci. 77: 703-708.
8
Chaudhry, O. 2008. Herbicide-resistance and weed-resistance management. International Publishing House, New Delhi. India. www.drozairchaudhry.com/Book%20Chapter%20I.doc. October 15, 2008
9
Chhokar, R. and Sharma, R. K. 2008. Multiple herbicide resistance in littleseed canarygrass (Phalaris minor): A threat to wheat production in India. Weed Bio & Manage. 8: 112-123.
10
De Prado, R., Gonzalez-Gutierrez, J., Menendez, J., Gasquez J., Gronwald, J. W. and Gimenez-Espinosa, R. 2000. Resistance to acetyl CoA carboxylase inhibiting herbicides in Lolium multiflorum. Weed Sci. 48: 311-318.
11
De Prado, R., Osuna, M. and Fischer, A. J. 2004. Resistance to ACCase inhibitor herbicides in a green foxtail (Setaria viridis) biotype in Europe. Weed Sci. 52: 506-512.
12
Devine, M. D. 1997. Mechanisms of resistance to acetyl-coenzyme A carboxylase inhibitors: a review. Pesticide Sci. 51: 259-264.
13
Eleni, K. S., Tal, A. and Rubin, B. 2000. Diclofop-resistant Lolium rigidum from northern Greece with cross-resistance to ACCase inhibitors and multiple resistance to chlorsulfuron. Pest Manag Sci. 56: 1054-1058.
14
Fathi, G. 2004. Competitive effects of wild oat on growth and yield of cultivars in Khuzestan conditions. 16th Iran Plant Protect congress.
15
Heap, I. M. 2011. International survey of herbicide resistant weeds. http://www.weedscience.org. Accessed: Wednesday, December 22, 2011.
16
Heap, I. M. and Morrison, I. N. 1996. Resistance to aryloxyphenoxypropionate and cyc1ohexanedione herbicides in green foxtail (Setaria viridis). Weed Sci. 44: 25-30.
17
LeBaron, H. M. and Gressel, J. 1982. Herbicide resistance in plants. New York. John Wiley & Sons. 401p.
18
Metzger, J. D. 1983. Promotion of germination of dormant weed seeds by substituted phthalimides and gibberllic acid. Weed Sci. 31: 285-289.
19
Minbashi moeini, M., Baghestani, M. A., Ahmadi, A., Abtali, Y., Esfandiari, H., Adim, H., Barjesteh, A., Bagherani, N., YounesAbadi, M., PourAzar, A., Jahedi, A., Jafarzadeh, N., Jamali, M., Hoseini, S. M., Nowrooz Zadeh, S., Delghandi, M., AghaBeigi, F., Sajedi, S., Javadi, B. and Moosavi, M. 2008. Analytical approach to weed management of irrigated wheat fields of Iran (from 2000 to 2005). Proceedings of the 2nd National Weed Sci Congress. .(In Persian with English Summary).
20
Moss, S. R., Clarke, J. H., Blair, A. M., Culley, T. N., Read, M. A., Ryan, P. J. and Turner, M. 1999. The occurrence of herbicide-resistant grass-weeds in the United Kingdom and a new system for designating resistance in screening assay. Pages 179-184 in Proceeding of the Brighton Crop Protection Conference on Weeds. Hampshire, UK: BCPC.
21
Moss, S. R., Perryman, S. A. M. and Tatnell, L. V. 2007. Managing herbicide-resistant blackgrass (Alopecurus myosuroides): Theory and practice. Weed Technol. 21: 300-309.
22
Porter, D. J., Kopec, M. and Hofer, U. 2005. Pinoxaden-a new selective postemergence graminicide for wheat and barley. Weed Science Society of America. 45:95 [Abstract].
23
Powles, S. B., Peterson, C. I., Bryan, B. and Jutsum, A. R. 1997. Herbicide resistance: Impact and management. Advance Agro. 58: 57-93.
24
Sandral, G. H., Dear, B. S., Pratley, J. E. and Cullis, B. R. 1997. Herbicide dose response rate response curve in subterranean clover determined by a bioassay. Aust J Exp Agr. 37: 67-74.
25
Sasanfar, H. M. 2008. Investigation of cross-resistance of wild oat (Avena ludovicina) populations collected from Fars province to ACCase inhibitor herbicides. MSc thesis, Azad Islamic Unversity. .(In Persian with English Summary).
26
Sattin, M., Gasparetto, M. A. and Campagna, C. 2001. Situation and management of Avena sterilis ssp. ludoviciana and Phalaris paradoxa resistant to ACCase inhibitors in Italy. Pages 755-562 in Proceedings of the Brighton Crop Protection Conference-Weeds. Farnham, Great Britan: British Crop Protection Council.
27
Seefeldt, S. S., Jensen, J .E. and Fuerst, E. P. 1995. Log-logestic analysis of herbicide dose-response relationships. Weed Technol.9: 218-227
28
Streibig, J. C. 1988. Herbicide bioassay. Weed Res. 28: 479-484.
29
Uludag. A., Park, K.W., Cannon, J. and Mallory-Smith, A. 2008. Cross resistance of Acetyle-CoA carboxylase (ACCase) inhibitor-resistant wild oat (Aven fatua) biotypes in the Pacific Northwest. Weed Technol. 22: 142-145.
30
Zand, E., Baghestani, M. A., Porazar, R., Sabeti, P., Ghezeli, F., Khayami, M. M. and Razazi, A. 2009. Efficacy evalution of Ultima (Nicosulfuron+Nimsulfuron), Lumax (Mesotrion+S-metolacholor+Terbuthlazine) and Amicarbazone (Dynamic) in comparison with current herbicide to control of weeds in corn. Agri Sci Technol. 23: 42-555. .(In Persian with English Summary).
31
Zand, E., Benakashani, F., Alizadeh, H. M., Soufizadeh, S., Ramazani K., Maknali, A. and Fereydounpoor, M. 2006. Resistance to Aryloxyphenoxypropionate herbicides in wild oat (Avena ludoviciana). Iran J Weed Sci, 2: 17 – 31. (In Persian with English Summary).
32
Zand, S., Baghestani, M. A., Bena Kashani, F. and Dastaran, F. 2010. Study on the efficacy of some current herbicides for control of wild oat (Avena ludoviciana Durieu) biotypes resistant and susceptible to Acetyl CoA Carboxylase (ACCase) inhibitors. J Plant Protect,24:242-251. (In Persian with English Summary).
33
ORIGINAL_ARTICLE
تاثیر غلظتهای مختلف سولفات آمونیوم روی کارآیی تعدادی از علفکشهای دارای بنیان اسیدی ضعیف
این پژوهش برای تعیین تاثیر کیفیت آب مورد استفاده جهت تهیه محلول علفکشهای دارای بنیان اسیدی ضعیف و اثر آن روی کنترل علفهرز زردخار[Picnomon acarna (L.) Cass]، به عنوان گیاه محک، در گندم و کلزا، در سال 1388 در گلخانه بخش تحقیقات علفهای هرز، موسسه گیاهپزشکی کشور انجام شد. میزان کاربرد علفکشهای مورد آزمایش که شامل کلوپیرالید، گلیفوسیت و آمیخته تو، فور-دی+ امثپآ بودند، به ترتیب به نسبت 24/0.، 64/2 و 72/0 کیلوگرم معادل اسید در هکتار کالیبره شدند. هر علفکش بصورت محلول در آب حاوی سولفات آمونیوم در غلظتهای صفر، 2، 4 یا 8 درصد، روی گیاهان مورد نظر در مراحل اولیه رویشی پاشیده شدند. سولفات آمونیوم، به موازات افزایش غلظت آن، موجب افزایش هدایت الکتریکی (EC) و کاهش pH محلول علفکشها شد. افزودن سولفات آمونیوم به علفکشهای گلیفوسیت و کلوپیرالید موجب کاهش معنیدار درصد شمار بوتههای زردخار گردید. در ارزیابی وزن خشک علفهرز، سولفات آمونیوم تاثیر معنیداری در افزایش کارآیی کلوپیرالید و تو، فور-دی+ امثپآ نداشت. علفکش تو، فور-دی+ امثپآ بدون سولفات آمونیوم بیش از محلول آن در آب حاوی سولفات آمونیوم باعث کاهش تعداد بوتههای زردخار شد. افزودن سولفات آمونیوم به محلول علفکش کلوپیرالید، روی گندم و کلزا، و همچنین افزودن آن به محلول تو، فور-دی+ امثپآ، روی گندم تاثیری نداشت.
https://ijws.areeo.ac.ir/article_1103_3ed0a891458110cc8aa6ca89ecc501ad.pdf
2010-08-23
113
121
توفور-دی+ امثپآ
زردخار (Picnomon acarna)
کلوپیرالید
گلیفوسیت
فاطمه
شاهوردی
1
کارشناسی ارشد
AUTHOR
منصور
منتظری
2
محقق
AUTHOR
مرجان
دیانت
3
استاد دانشگاه
AUTHOR
Beckett, T. H., Stoller, E.W. and Bode,L.E. 1992. Quizalofop and sethoxydim activity as affected by adjuvants and ammonium fertilizers. Weed Sci.40: 12-19.
1
Bukun, B., Gaines, T. A., Nissen, S. J., Westra, P., Brunk, G., Shaner, D. L., Sleugh, B. B. and Peterson, V. F. 2009. Aminopyralid and clopyralid absorption and translocation in Canada thistle (Cirsium arvense). Weed Sci. 57: 10-15.
2
Callows, K., Deveau, J. 2010. Water quality affects herbicides efficacy, weed management program Lead-Horticulture, University of Ontario/OMAFRA.
3
Cowbrough, M. 2002. Ammonium sulphate (AMS) and glyphosate. Ministry of Agriculture Food & Rural Affairs, Ontario, USA.
4
Curran, W. S. 2004. Weed management organic cropping systems. The Penn State University, Park, PA. Available online: http://pubs.cas.psu.edu/free puds/pdfs/uc. 187.pdf.
5
Ferrll, J. A., McDonald, G. E. and Sellers B. 2008. Adjuvants. Institute of Food and Agriculture Science, University of Florida.
6
Gronwal, J. W., Jourdan, S. W., Wyse, D. L., Somers, D. A. and Magnusson, M. U. 1993. Effect of ammonium sulfate on absorption of imazethapyr by quackgrass (Elytrigia repens) and maize (Zea mays) cell suspension culture. Weed Sci. 41: 325-334.
7
Hall, G. J., Hart, C. A. and Jones C. A. 2000. Plants as sources of cations antagonistic to glyphosate activity. Pest Manag. Sci. 56: 351-358.
8
Holm, F. A. and Henry, J. L. 2005. Water quality and Herbicides. Crop Science, Plant Ecology and Soil Science, University of Saskatchewan.
9
Hsiao, A. I., Liu, S. H. and Quick, W. A. 2004. Effect of ammonium sulfate on the phytotoxicity. Foliar up take, and translocation of imazamethabenz in wild oat. University of Regina., J. Plant Growth Regul. 15:115-120.
10
Kloppenburg, G. D. J. and Hall, J. C. 1990. Penetration of clopyralid and related weak acid herbicides into and through isolated cuticular membranes of Euonymus fortunei. Weed Res. 30: 431-438.
11
Mirghasemi, S., Daneshian, G. and Baghestani, M. A. 2008. Evaluation of synergistic effects of fertilizers (amunium sulphate and urea) and glyphosate on weed control in tea (Camellia sinensis). In the Proceeding of 2nd National Weed Science Congress, Vol. I, Weed Management & Herbicides, Mashhad, 29 and 30 January 2008, 437-440. .(In Persian with English Summary).
12
Nalewaja, J. D., Matysiak, R. and Szeleniak, E. 1994. Sethoxydim response to spray carrier chemical properties and environment. Weed Technol. 8: 591-597.
13
Peterson, D. E and Thompson, C. R. 2009. Glyphosate weed control Enhancement with Ammonium sulfate and commercial water conditioning agents. Weed Technol. 19: 315-322.
14
Pline, W. A. Hatzios, K. K. Hagood, E. S. 2000. Weed and Herbicide-Resistant Soybean (Glycine max) Response to Glufosinate and Glyphosate Plus Ammonium Sulfate and Pelargonic Acid. Weed Technol. 14: 667-674.
15
Rao, V. S. F., Rahman, H. S., Singha, K. Dutha, M. C., Sarkia, S. N. and B. C. Phukan. 1997. Effective weed control in tea by glyphosate. Indian J. Weed Sci. 8:1-14.
16
Renner, K. A. 1991. Canada thistle (Cirsium arvense) control in sugarbeet with clopyralid. Weed Technol. 5: 392-395.
17
Spann, J. F. and Richardson, C. B. 1985. Measurement of the water cycle in mixed ammonium acid sulfate particles. Atmosph. Envir. 19: 819-825.
18